生物矿化法制备纳米氧化铁及其对亚甲基蓝的吸附
Preparation of nano ferric oxide by biomineralization and its adsorption to methylene blue
收稿日期: 2021-12-01
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Received: 2021-12-01
作者简介 About authors
李倩玮(1987—),博士,副教授,硕士生导师E-mail:
陈春茂,博士,教授,博士生导师E-mail:
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李倩玮, 王雨竹, 张宇鑫, 陈春茂.
LI Qianwei.
目前,处理染料废水的方法主要有吸附法、光催化法、膜分离法以及电化学法等〔4-6〕。其中,吸附法由于其成本低、处理方法简单、处理效果显著、无二次污染等特点,得到了最广泛的应用。目前,较为常用的吸附剂主要有活性炭、天然蒙脱土、纤维系列、活化煤、活性硅藻土、树脂等〔7〕。纳米Fe3O4是一种常见的磁性吸附剂,对水中多种无机离子及有机物都具有较强的吸附能力,可应用于去除水中的有机污染物或重金属离子〔8〕。纳米Fe3O4的特点是:颗粒粒径较小,比表面积大,能与污染物大面积接触,具有很强的吸附能力,磁性较强有利于回收,重复利用率较高〔9-12〕。使用易解吸附且可重复使用的磁性纳米Fe3O4吸附处理废水中的有机染料已成为目前的研究热点〔13〕。 纳米Fe3O4的制备方式主要有:共沉淀法、溶剂热法、微乳液法、热分解法等〔14〕。上述方法均可以制备出良好的磁性铁氧化物材料,但其存在各种弊端,因此迫切需要寻求一些新的制备方法。
本研究采用生物矿化法制备纳米磁性Fe3O4,其优点在于所需材料简单易得。菌株选取产脲酶菌株产酸克雷伯菌(Klebsiella oxytoca,K. oxytoca)和真菌粗糙脉孢菌(Neurospora crassa,N. crassa),通过生物诱导矿化的作用,控制培养基中铁元素的含量来改变微生物的生长环境,从而使铁离子不断沉积到微生物的表面。培养一段时间之后进行水热反应,即可得到纳米Fe3O4材料。以亚甲基蓝(MB)作为目标污染物,探究了制备的纳米Fe3O4材料的吸附性能。
1 实验部分
1.1 材料与仪器
菌种来源:实验选用的细菌为产酸克雷伯菌(Klebsiella oxytoca,K. oxytoca),采用脲酶筛选培养基从土壤中筛选得到;真菌为粗糙脉孢菌(Neurospora crassa,N. crassa),购于中国农业微生物菌种保藏管理中心。
培养基:LB(Luria-Bertani)培养基、MEA(Malt extract agar)固体培养基、ME(Malt extract)液体培养基、AP1培养基。
材料:蛋白胨、酵母浸粉、琼脂粉,购于北京奥博星生物技术有限责任公司。麦芽浸膏,购于美仑生物。尿素、硫酸亚铁、硫酸镁、硫酸锰,纯度≥99.0%;硫酸锌,纯度≥99.5%,购于天津市光复科技发展有限公司。氯化钾、氯化钠,纯度≥99.0%;戊二醛,纯度≥25%;氢氧化钠,纯度≥96.0%;葡萄糖,分析纯,购于天津市福晨化工试剂厂。无水氯化钠、无水乙醇、硫酸铜,分析纯,购于北京化工厂。1,4-哌嗪二乙磺酸,纯度≥99.0%,购于上海阿拉丁生化科技股份有限公司。三氯化铁,分析纯,购于天津市大茂化学试剂厂。实验用水均为超纯水。
仪器:ME104电子分析天平、FiveEasy Plus酸度计,梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司;Arium mini超纯水机,Sartorius;YXQ-LS-50SⅡ立式压力蒸汽灭菌器,上海博迅实业有限公司医疗设备厂;HZP-250全温振荡培养箱、SHP-250生化培养箱,上海精宏实验设备有限公司;H1850R高速冷冻离心机,湘仪离心机仪器有限公司;DHG-9055A电热鼓风干燥箱,上海一恒科学仪器有限公司;UV-1601紫外可见分光光度计,北京瑞利分析仪器有限公司;FD-1B-50真空冷冻干燥机,北京博医康实验仪器有限公司;SW-CJ-2FD洁净工作台,苏州安泰空气技术有限公司。
1.2 纳米Fe3O4的制备
1.2.1 不同菌株的生物矿化培养
将K. oxytoca接种于装有3 mL LB液体培养基的试管中,在30 ℃、125 r/min的摇床内培养12 h。之后按3%(体积分数)接种量接种至AP1培养基中进行扩大培养,AP1培养基的配制方法参考文献〔15〕。然后在超净工作台上使用注射器通过0.2 μm孔径的无菌醋酸纤维素膜过滤器向高压灭菌后的AP1培养基中加入FeSO4·7H2O溶液,使Fe2+最终浓度分别为10、20 mmol/L。为防止硫酸亚铁溶液久置被空气中的氧气所氧化,应现用现配。然后在30 ℃、125 r/min的摇床内培养48 h,用于生物矿物的生成。
将N. crassa接种到 MEA固体培养基中,在25 ℃下培养2~3 d。待菌丝旺盛,完全覆盖住培养基时,将 MEA培养基打孔,分别接种至含有10、20 mmol/L Fe2+的AP1液体培养基中培养,于25 ℃下培养72 h,用于生物矿物的生成。
1.2.2 纳米Fe3O4的制备
培养一定时间后,分别离心(10 000 r/min、5 min、4 ℃)收集菌体,然后将菌体置于水热釜中,在电热鼓风干燥箱中于 160 ℃下水热反应6 h。收集水热反应后的菌体于通风橱中干燥。待样品完全干燥后,将样品研磨至粒径为 0.1~10 μm的粉末,即得到利用不同菌株在不同浓度Fe2+条件下制备的Fe3O4。
收集水热反应前后的菌体,利用2.5%戊二醛溶液进行固定〔15〕,用于后续矿物形貌分析。
1.3 吸附实验
称取100 mg吸附剂置于250 mL锥形瓶中,向其中加入100 mL 配制好的10 mg/L的亚甲基蓝溶液,常温下振荡反应一定的时间。分别在反应时间为0、1、3、5、10、20、30、60、90、120 min时取上清液,采用紫外可见分光光度计在波长664 nm处测其吸光度,通过标准曲线方程得到亚甲基蓝浓度。MB的吸附标准曲线方程为y=0.060 9+0.197 69x,
2 结果与分析
2.1 扫描电镜(SEM)和X射线能谱(EDX)分析
对以K. oxytoca为载体培养得到的水热反应前后的菌体进行SEM表征,结果如图1所示。
图1
图1
以K. oxytoca为载体制备材料的SEM表征结果
(a)水热前放大10 000倍;(b)水热前放大100 000倍;
(c)水热后放大5 000倍;(d)水热后放大100 000倍
Fig. 1
SEM characterization results of materials prepared with K. oxytoca as carrier
对以N. crassa为载体培养得到的水热反应前后的菌体进行SEM表征,结果如图2所示。
图2
图2
以N. crassa为载体制备材料的SEM表征结果
(a)水热前放大2 000倍;(b)水热前放大250 000倍;
(c)水热后放大2 000倍;(d)水热后放大50 000倍
Fig. 2
SEM characterization results of materials prepared with N. crassa as carrier
对水热前后含10 mmol/L Fe2+的培养基制备得到的2种菌体材料表面进行EDX分析,结果表明,水热前后菌体材料的主要元素为C、O、Fe,其中以K. oxytoca为载体培养得到的水热前后菌体表面的C、O、Fe原子数占比分别为45.89%、40.46%、13.65%和22.04%、52.31%、25.65%;以N. crassa为载体培养得到的水热前后菌体表面的C、O、Fe原子数占比分别为60.25%、34.12%、5.63%和38.46%、44.12%、17.42%。因为菌体表面均发生了生物矿化反应,使得Fe、O元素附着在菌体表面,而水热反应使菌体表面的Fe、O元素含量增高。
2.2 X射线衍射(XRD)分析
图3为用含10 mmol/L和20 mmol/L Fe2+的AP1培养基培养K. oxytoca制备材料的XRD表征结果。
图3
图3
以K. oxytoca为载体制备材料的XRD表征结果
Fig. 3
XRD characterization results of materials prepared with K. oxytoca as carrier
图4为用含10 mmol/L和20 mmol/L Fe2+的AP1培养基培养N. crassa制备材料的XRD表征结果。
图4
图4
以N. crassa为载体制备材料的XRD表征结果
Fig. 4
XRD characterization results of materials prepared with N. crassa as carrier
由图4可以看出,制备的2种材料的特征峰均能与Fe3O4的标准吸收峰相匹配,说明对于N. crassa而言,无论培养基中的Fe2+含量为多少,均可以成功使用生物矿化法制备出Fe3O4。
2.3 BET比表面积测试结果及分析
图5为生物矿化法制备的磁性纳米Fe3O4的氮气吸附-脱附曲线及其孔径分布。制备原料均含10 mmol/L Fe2+。
图5
图5
生物矿化法制备的磁性纳米Fe3O4的等温吸脱附曲线及孔径分布
Fig. 5
Isothermal desorption curve and pore size distribution of magnetic nano-Fe3O4 prepared by biomineralization method
由图5(a)可知,利用K. oxytoca制备的Fe3O4材料的吸附效果要强于利用N. crassa制备的Fe3O4。由图5(b)可知,2种材料主要为中孔和大孔结构。利用K. oxytoca制备的Fe3O4的比表面积和总孔容分别为45.4 m2/g和0.177 cm3/g,微孔孔容为0.006 6 cm3/g。利用N. crassa制备的Fe3O4的比表面积和总孔容分别为24.5 m2/g和0.103 cm3/g,微孔孔容为0.005 5 cm3/g。通过比较得出,利用K. oxytoca制备出的Fe3O4材料的比表面积和孔容更大。根据材料的比表面积大小和孔容大小可以发现,利用K. oxytoca和N. crassa制备得到的Fe3O4材料都具有良好的吸附能力和分散性能,良好的分散性和稳定性可以减轻纳米颗粒易团聚导致反应活性降低的问题。以这2种方式最终制得的材料与一般化学方法制得的纳米氧化铁相比,都具有粒径更小、分散性更好的特点〔10〕。
2.4 磁滞回归线测定结果分析
图6为分别利用K. oxytoca和N. crassa制备的Fe3O4的磁滞曲线。制备原料均含10 mmol/L Fe2+。
图 6
图 6
生物矿化法制备的磁性纳米Fe3O4的磁滞曲线
Fig. 6
Hysteresis curves of magnetic nano-Fe3O4 prepared by biomineralization
2.5 吸附实验结果分析
图7为2种菌株制备的Fe3O4材料的吸附性能。
图7
图7
不同条件下制备的磁性纳米Fe3O4的吸附曲线
Fig. 7
Adsorption curves of magnetic nano-Fe3O4 prepared under different conditions
从图7可以看出,随着吸附时间的增加,吸附量增大,当吸附时间为60 min时,基本达到吸附平衡。同时对比图中各条吸附曲线可知,2种不同菌株生物矿化法制备出的Fe3O4材料的吸附能力强弱:K. oxytoca 20 mmol/L Fe2+>K. oxytoca 10 mmol/L Fe2+>N. crassa 20 mmol/L Fe2+>N. crassa 10 mmol/L Fe2+>N. crassa无Fe2+>K. oxytoca无Fe2+。本实验利用K. oxytoca在20 mmol/L Fe2+条件下制备的Fe3O4材料在60 min时可以吸附69.8%的亚甲基蓝,达到了较高的吸附去除率,这表明以此制备得到的材料对亚甲基蓝具有较好的吸附性能〔18〕。
3 结论
(1)通过生物矿化法成功制备了纳米氧化铁,制备的材料多为球状和多孔结构,且大小均匀,分散性高,顺磁性好,吸附效果好。
(2)制备的材料具有较高的分散性和稳定性,可以减轻纳米铁颗粒易团聚导致反应活性降低的问题,同时磁学性质好也决定了在使用过程中能够很容易将其从水体中分离出来。
(3)制备的Fe3O4材料对亚甲基蓝具有较强的吸附作用。
(4)以不同菌株作为载体均能制得Fe3O4材料,但其具有不同的吸附性能。其中,利用K. oxytoca在20 mmol/L Fe2+条件下制备的Fe3O4材料对亚甲基蓝的吸附效果最好,吸附率为 69.8%,2 h吸附量为6.98 mg/g;利用N. crassa在10 mmol/L Fe2+条件下制备的Fe3O4材料对亚甲基蓝的吸附效果较弱,吸附率为47.2%,2 h吸附量为4.72 mg/g。
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