游离亚硝酸预处理实现MBBR短程硝化的快速启动
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Rapid start-up of MBBR partial nitrification by free nitrite pretreatment
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关键词:
Keywords:
本文引用格式
丁凡, 梁东博, 李东岳, 李朋, 李军, 陈筱秋.
DING Fan.
短程硝化主要通过抑制亚硝酸盐氧化菌(NOB)的生长来实现亚硝酸盐氮(NO2--N)的积累,可通过控制酸碱度(pH)〔7-8〕、游离氨(FA)〔9-10〕、溶解氧(DO)〔11-12〕、游离亚硝酸(FNA)〔13-14〕及添加抑制剂〔15-17〕等实现短程硝化的建立。目前,短程硝化启动时间长且运行不稳定,仍是城市污水实现自养脱氮的瓶颈。研究发现FNA处理活性污泥可选择性地抑制NOB并保留氨氧化菌(AOB)活性,是实现稳定短程硝化最简便有效且最有前景的技术之一〔18-20〕。Huihui CUI 等〔19〕通过高浓度FNA处理活性污泥32 d,成功启动短程硝化〔亚硝氮积累率(NAR)≥90%〕并实现了低温条件下的稳定运行。Cancan JIANG等〔20〕采用FNA处理活性污泥18 h实现短程硝化的快速启动(NAR≥90%)。近年来,采用FNA预处理实现短程硝化的研究以活性污泥为主〔14,21-22〕,FNA预处理在生物膜法中的应用研究鲜有报道。FNA预处理对生物膜工艺是否有效,在生物膜工艺中应用FNA预处理所需最佳浓度条件仍未可知。
笔者采用MBBR建立污水处理的硝化反应器,探讨采用FNA预处理建立稳定的MBBR-短程硝化工艺的可行性,评估不同FNA浓度下硝化细菌的活性和微生物群落变化,研究其对实现短程硝化稳定运行的影响。
1 材料与方法
1.1 实验装置与材料
圆柱形MBBR由有机玻璃制成,有效容积22 L。实验采用K3型鲍尔环悬浮填料,直径25 mm,填充比为30%。实验装置主要包括搅拌器、DO探头、pH探头、水质分析仪(德国WTW Multi 3420i)、微孔曝气扩散器、转子流量计、气泵等。MBBR每天运行2个周期,每个周期12 h,包括10 min进水、11.7 h曝气、10 min排水,排水比为70%。整个实验期间监测温度、pH和DO。实验装置见图1。
图1
图1
实验装置
1—曝气泵;2—转子流量计;3—鲍尔环;4—DO探头;5—pH探头;6—曝气盘;7—WTW水质分析仪;8—蠕动泵。
Fig. 1
Experimental device
试剂:氯化铵(NH4Cl,99.78%),天津渤化永利化工股份有限公司;醋酸钠(CH3COONa,99.55%),连云港中鸿化工有限公司;CaCl2(98%),上海阿拉丁生化科技股份有限公司;MgSO4·7H2O(分析纯)、KH2PO4(99.5%)、CuSO4·5H2O(分析纯)、MnCl2·4H2O(分析纯)、KI(分析纯)、Na2MoO4·2H2O(分析纯),国药集团化学试剂有限公司。FeCl3·6H2O(99%),上海麦克林生化科技有限公司;H3BO3(99.5%),天津市福晨化学试剂厂;ZnSO4·7H2O(99.5%)、CoCl2·6H2O(99%),天津市光复科技发展有限公司。
实验用水采用模拟生活污水(人工配水),以氯化铵和醋酸钠作为氮源和碳源。模拟生活污水的pH在7~8。人工配水成分见表1。
表1 人工配水成分
Table 1
项目 | 用量 | 项目 | 用量 |
---|---|---|---|
NH4Cl | 230 mg/L | FeCl3·6H2O | 1 500 mg/L |
CH3COONa | 384.6 mg/L | H3BO3 | 150 mg/L |
CaCl2 | 4 mg/L | CuSO4·5H2O | 50 mg/L |
MgSO4·7H2O | 40 mg/L | KI | 150 mg/L |
KH2PO4 | 40 mg/L | MnCl2·4H2O | 110 mg/L |
微量元素 | 0.6 mL/L | ZnSO4·7H2O | 120 mL/L |
— | — | CoCl2·6H2O | 150 mg/L |
— | — | Na2MoO4·2H2O | 60 mg/L |
1.2 FNA预处理生物膜方法
使用已成熟的全程硝化良好的生物膜,预处理前检测AOB和NOB活性,并取生物膜样品提取DNA。将已挂膜成熟且硝化性能良好的生物膜按填充比为30%均匀划分至6个相同的有效容积为1 L的MBBR中。用恒温槽维持温度在(25.0±0.5) ℃,用1.0 mol/L氢氧化钠溶液和1.0 mol/L盐酸溶液维持pH在5.0±0.1。添加亚硝酸钠至每个反应器,维持反应器内FNA质量浓度分别为0、3.2、6.4、9.6、12.8、16.0 mg/L(以NO2--N计),浸泡12 h进行预处理。对照组为未经FNA预处理生物膜(pH为7.0~7.5)。FNA质量浓度根据
式中:
T——反应器内温度,℃;
pH——反应器pH。
待预处理结束后,分别测定各反应器中AOB和NOB活性,并取生物膜样品提取DNA。通过AOB和NOB活性分析及微生物菌群分析,评价预处理12 h时FNA浓度对污泥特性的影响,并确定FNA预处理最佳浓度。
1.3 AOB和NOB活性测定
在测定AOB和NOB活性之前,用去离子水将鲍尔环洗涤3次,以去除剩余的NH4+-N、NO2--N和硝酸盐氮(NO3--N)。随后在1 L MBBR中加入NH4Cl和NaNO2,维持反应器初始NH4+-N和NO2--N质量浓度均为30 mg/L。整个实验过程中,温度控制在(25.0±0.5) ℃,pH维持在7.0~7.5。同时,通过曝气泵提供充足的氧气(DO为6.0~7.0 mg/L)。每30 min取一次水样,共3 h。待反应结束后测定各水样中的NH4+-N和NO3--N,作线性回归分析,对NH4+-N去除率和NO3--N产率进行评价。以NH4+-N去除率和NO3--N产率分别表征AOB和NOB的活性。FNA处理后生物膜活性的变化情况,通过处理前生物膜活性的占比表示。
1.4 高通量测序
聚合酶链式反应(PCR)扩增采用16S RNA基因V3和V4区域通用引物341F(CCTACGGGNGGCWGCAG)和805R(GACTACHVGGGTATCTAATCC)。扩增反应体系(30 μL)包括2×Taq master Mix×15 μL,Bar-PCR primer F(10 μmol/L)1 μL,Primer R (10 μmol/L) 1 μL,Genomic DNA 10~20 ng,加H2O至30 μL。扩增程序为95 ℃预变性3 min;94 ℃变性20 s、55 ℃延伸20 s、72 ℃延伸30 s,5个循环;再72 ℃延伸5 min。相同浓度的PCR产物进行等量混样,充分混合后使用琼脂凝胶电泳监测混合后的PCR产物,然后进行DNA纯化回收,利用Qubit3.0 DNA检测试剂盒对回收的DNA精确定量,以方便按照1∶1的等量混合后测序。等量混合时,每个样品DNA量取10 ng,最终上机测序浓度为20 pmol/L。测序、序列拼接过滤及操作分类单元(OTUs)聚类均由上海生工科技有限公司完成。
1.5 生物膜短程硝化的启动及其稳定运行研究
为研究经FNA预处理后短程硝化的稳定性,采用实验确定的最佳FNA预处理浓度,对全程硝化性能稳定的生物膜进行FNA预处理。
稳定运行实验直接在MBBR中对生物膜进行预处理,预处理方法与批次实验相同,预处理结束后继续维持MBBR正常运行。实验仅对生物膜进行1次FNA预处理,实验为期50 d。实验期间,每天测定1次MBBR进水和出水中的NH4+-N、NO2--N和NO3--N。
1.6 分析方法
NH4+-N——纳氏试剂分光光度法;NO2--N——N-(1-萘基)-乙二胺分光光度法;NO3--N——麝香草酚分光光度法;DO、pH和温度采用Multi 3420i在线探头检测(德国WTW)。MLSS、MLVSS——超声波(45 kHz,120 W,2~3 min)剥落生物膜,离心(10 000 g,15 min),后采用重量法测定。
NAR和氨氮去除率(ARR)分别按照
式中:
实验以ARR达到60%作为硝化性能良好的评价指标,采用NAR达到80%作为评价短程硝化启动成功、稳定运行和破坏修复效果的指标〔23〕。
2 结果与讨论
2.1 FNA浓度对AOB和NOB活性的影响
为了确定FNA预处理生物膜建立短程硝化反应的最佳条件,测定不同FNA浓度预处理生物膜12 h时AOB和NOB的活性变化,结果见图2。
图2
图2
不同FNA浓度预处理后AOB和NOB的相对活性
Fig. 2
The relative activity of AOB and NOB after pretreatment with different FNA concentration
2.2 FNA浓度对AOB和NOB丰度的影响
AOB和NOB的丰度是反映短程硝化成功建立的关键指标。采用qPCR对不同质量浓度FNA预处理的AOB(amoA)和NOB组(Nitrospira和Nitrobacter)的丰度进行定量分析,结果见图3。
图3
图3
不同FNA处理条件下AOB和NOB的丰度变化
Fig. 3
Abundance changes of AOB and NOB under different FNA treatments
由图3可见,AOB在硝化菌群中占主导地位,而NOB菌群中占主导地位的是Nitrospira不是Nitrobacter,这与此前的报道一致〔25-26〕。AOB和NOB的丰度均随FNA质量浓度的增加而降低,但FNA对NOB的影响较AOB更显著,与FNA对AOB和NOB活性的影响相似。经FNA(6.4 mg/L HNO2-N)处理12 h后,AOB数量降到2.68×108 g-1(以MLSS计),比未处理的污泥减少了30.39%。在相同条件下NOB数量降到2.01×106 g-1(以MLSS计),比未处理的污泥减少64.42%。NOB种群数量与活性之间存在显著正相关,结合2.1结果可知,NOB活性降低更可能是失活的原因,而不是抑制的原因。
2.3 FNA浓度对细菌菌群的影响
为考察FNA预处理对活性污泥中细菌群落结构的影响,进行高通量测序分析。利用MiSeq高通量测序平台共读出241 738~359 690条有效序列,且所有样品的覆盖率均达到99.6%以上,说明样品的测序深度合适,所得数据能够很好地反映环境中微生物群落结构的真实信息。基于标准化OTU计算 α 多样性指数,包括Ace、Chao1、Simpson和Shannon指数(见表2),以评估FNA浓度对微生物丰富度和多样性的影响。其中,Ace和Chao指数表征样品的群落丰富度,Simpson和Shannon指数反映样品的多样性和均匀度。
表2 生物多样性指数统计表
Table 2
样品 | 序列 条数 | 覆盖率 | 丰富度 | 多样性 | ||
---|---|---|---|---|---|---|
Ace | Chao | Shannon | Simpson | |||
Y0 | 333 761 | 0.996 69 | 4 563.598 033 | 4 113.238 724 | 4.083 585 | 0.059 985 |
F0 | 359 690 | 0.997 07 | 4 158.047 047 | 3 791.937 318 | 4.257 852 | 0.038 332 |
F1 | 247 255 | 0.996 15 | 4 177.460 893 | 3 757.224 359 | 4.277 002 | 0.036 953 |
F2 | 340 835 | 0.996 92 | 4 135.286 769 | 3 716.411 940 | 4.428 967 | 0.031 884 |
F3 | 258 586 | 0.996 49 | 3 579.876 211 | 3 192.920 578 | 4.355 997 | 0.034 049 |
F4 | 241 738 | 0.996 24 | 3 591.310 816 | 3 195.820 702 | 4.332 972 | 0.037 957 |
F5 | 322 088 | 0.997 05 | 3 836.082 237 | 3 473.305 398 | 4.012 956 | 0.070 853 |
为了解FNA对特定微生物种群的影响,对微生物群落的变化作进一步评价。图4为各样品在科水平上微生物的种群结构,共总结了相对丰度较高的前11个分类类别,未分类的序列被标记为“Others”。
图4
图4
科分类水平上各样品的生物群落结构
Fig. 4
The biocommunity structure of each sample at the level of family classification
由图4可知,接种污泥和FNA预处理后污泥中的微生物群落均以Rhodocyclaceae为主,占细菌总序列的13.21%~40.01%。据报道,在污水处理系统中发现的Rhodocyclaceae大多数都是反硝化菌,且可利用亚硝酸盐作为电子受体〔27〕。本研究中FNA处理后生物膜的Rhodocyclaceae均比接种生物膜(Y0)的相对丰度少,由Y0中的40.01%降至F0中的13.21%,但仍为优势菌属。这可能是由于所选取的FNA浓度较高,反硝化菌虽然可利用亚硝酸盐作为电子受体,但过高浓度的FNA会抑制Rhodocyclaceae的生长。预处理后污泥的其他优势菌与前人研究发现的优势菌科〔20, 28-29〕一致,分别为Xanthomonadaceae〔20〕、Rhodobacteraceae〔26〕、Acidobacteria〔28〕和Cytophagales_unclassified,其相对丰度分别稳定在13.77%、4.70%、4.00%、3.18%左右。FNA处理活性污泥后,可观察到特定科水平的变化,但微生物群落并没有发生明显的变化。此外,Comamonadaceae、Saprospiraceae、Planctomycetaceae和Chitinophagaceae菌科的变化趋势相同,均随FNA的增加而先增加后减少。这说明适量的FNA可促进微生物的生长和繁殖,但过量的FNA会导致部分微生物不适应环境而被淘汰。
科水平上变化最明显的是Nitrospiraceae(NOB的一种),相对丰度从Y0的1.39%降至F0的0.92%;此后随FNA增加至6.4 mg/L,其相对丰度降至0.19%,FNA质量浓度增至16.0 mg/L时相对丰度降至0.06%。Nitrosomonadaceae是AOB菌的一种,其相对丰度与Nitrospiraceae相比变化较小。随着FNA从0增至6.4 mg/L,Nitrosomonadaceae的相对丰度从1.79%降至1.32%;FNA继续增至16.0 mg/L,Nitrosomonadaceae的相对丰度从1.32%降至0.11%。在科水平上,当FNA由0增加至6.4 mg/L时,NOB受到的影响比AOB大;当FNA由6.4 mg/L增加至16.0 mg/L时,FNA对AOB的影响比对NOB的影响更大。
属水平上微生物的群落结构见图5。
图5
图5
属分类水平上各样品的生物群落结构
Fig. 5
The biocommunity structure of each sample at the level of genus classification
由图5可知,Nitrosomonas (AOB)初始相对丰度为0.92%。随着FNA的提高,Nitrosomonas在F2(6.4 mg/L)和F5(16.0 mg/L)中的相对丰度降低至0.78%和0.39%。在接种生物膜中,NOB由Nitrobacter和Nitrospira组成,其相对丰度分别为0.16%和0.32%。随着FNA的增加,Nitrobacter和Nitrospira在F2(6.4 mg/L)中相对丰度分别降至0.1%和0.09%;当FNA质量浓度升至16.0 mg/L时(F5),Nitrobacter和Nitrospira最终降至0.07%和0.02%。随着FNA质量浓度的提高,Nitrobacter成为NOB的主要菌属,这是因为Nitrobacter是一种r型细菌,它在高NO2--N环境下更有优势。Nitrobacter在硝态菌群中占主导地位时,可以抑制Nitrospira的生长,提高短程硝化的稳定性〔30〕。在属水平上,当FNA质量浓度由0增加至6.4 mg/L时,NOB的相对丰度降幅比AOB的更大,当FNA质量浓度由6.4 mg/L增加至16.0 mg/L时,FNA对AOB的影响比对NOB的影响更大。
2.4 FNA预处理对生物膜短程硝化稳定性的影响
由活性实验、qPCR和高通量结果分析可知,当FNA质量浓度为6.4 mg/L时,可有效减少NOB的丰度和活性,并维持AOB的活性。FNA质量浓度由6.4 mg/L增加至16.0 mg/L时,FNA对AOB的影响比对NOB的影响更大,且FNA质量浓度为9.6 mg/L和12.8 mg/L时预处理后的效果相似。当FNA质量浓度为16.0 mg/L时,NOB的活性几乎为0,但AOB的活性也不足50%,NH4+-N去除效果差。因此,考虑到脱氮效果及经济成本,实验选择FNA质量浓度为6.4 mg/L为预处理的最佳条件。
已有研究表明,FNA完全抑制NOB和AOB生长的质量浓度分别为0.02 mg/L和0.4 mg/L〔31〕。实验所选取的FNA质量浓度远高于此值,且与普通活性污泥法采用的FNA相比也较高。Cancan JIANG等〔20〕采用1.8 mg/L FNA预处理活性污泥成功实现短程硝化,本实验选取的FNA质量浓度为6.4 mg/L,是普通活性污泥法的3倍多。预处理时间可能是导致FNA浓度差别的原因,处理时间越短所需要的FNA浓度越大。此外处理微生物的性状不同可能是另一原因,生物膜与活性污泥相比具有一定的厚度,传质的影响导致FNA对生物膜内部影响作用缓慢,从而使所需的FNA浓度增大。
在污水处理中,对NOB的长期有效抑制是实现短程硝化稳定运行的关键。为探究FNA预处理生物膜实现的短程硝化能否稳定运行,进行了为期50 d的实验研究。为维持反应器中足够的氧基质浓度,并使鲍尔环能够保持良好的移动效果,控制反应器中DO质量浓度为6.0 mg/L。反应器硝化性能的变化情况见图6。
图6
图6中,第1~10 天,反应器出水NH4+-N和NO2--N几乎为0,出水NO3--N高达(45±5) mg/L,全程硝化性能良好。在第11 天时,对全程硝化生物膜浸泡12 h进行预处理,预处理FNA质量浓度为6.4 mg/L。生物膜经FNA预处理后NAR迅速升高至80%以上并保持稳定,出水NO3--N下降,至第13 天出水NO3--N降至(5±3) mg/L,出水NO2--N升高至(30±5) mg/L并保持稳定。
在实验第9、12、50 天的典型周期内,对各基质浓度的变化情况进行沿程测试,结果见图7。
图7
由图7可知,第9 天运行周期结束时,出水NH4+-N、NO2--N、NO3--N分别为6.08、3.25、35.56 mg/L,生物膜全程硝化性能良好。COD在周期开始3 h内几乎被分解完全,出水COD为50 mg/L左右。第12 天典型周期内,出水NO2--N浓度升高。在进水水质相同的条件下,至反应周期结束,出水NH4+-N、NO2--N、NO3--N的质量浓度分别为17.57、28.19、2.91 mg/L。COD在3 h内几乎被分解完全,出水COD为60 mg/L左右。实验运行第50 天时,在整个运行周期生物膜仍保持良好的短程硝化性能。至运行周期结束,NH4+-N、NO2--N、NO3--N的质量浓度分别为7.73、32.64、3.2 mg/L,COD为47 mg/L左右。
图7中,第9天时生物膜全程硝化性能良好,至运行的第10 小时,进水NH4+-N几乎全部被氧化为NO3--N,表明AOB、NOB活性较好。第12 天时,生物膜经FNA处理后,NOB活性下降,出水NO2--N浓度升高。运行周期末,NH4+-N浓度与全程硝化时的出水NH4+-N浓度相比略有提高。FNA在抑制NOB活性的同时,对AOB也产生了一定的抑制作用〔32〕。反应器运行至第50 天时,进水NH4+-N几乎全部被氧化为NO2--N,出水几乎无NO3--N产生,NAR高达90%。实验结果表明生物膜经FNA处理后,NOB活性显著降低,成功实现了短程硝化的启动。实验表明采用适量的FNA处理生物膜后,亚硝化性能显著降低,成功实现了MBBR-短程硝化工艺的启动和稳定运行。
许多因素已被证明有助于短程硝化的启动。杨庆等〔33〕研究认为通过将DO控制在0.5 mg/L条件下可实现亚硝酸盐的大量积累。彭永臻等〔34〕研究发现pH是污水处理中抑制NOB活性的一个重要参数。当pH在8.0以上时,可以实现亚硝氮的积累。然而本实验是在中性(pH为7.0~7.5)、高DO(DO为6.0 mg/L)条件下进行的,说明启动短程硝化的主要原因是FNA预处理降低NOB的数量,使NOB活性降低。由此可知,通过应用适宜浓度的FNA处理生物膜,选择性地抑制NOB的活性来实现短程硝化的启动和稳定运行是可行的。
3 结论
研究了FNA预处理生物膜建立短程硝化的可行性、最佳条件及其对生物膜微生物群落的影响,评估了FNA预处理对所建立短程硝化稳定性的影响。
(1)FNA预处理时间为12 h时,实现MBBR-短程硝化工艺的最佳FNA质量浓度为6.4 mg/L,处理后NOB活性降至28.67%,AOB活性为66.34%。在最佳FNA处理条件下预处理后可以有效减少NOB的丰度,从而实现MBBR-短程硝化工艺的启动和稳定运行。
(2)适量的FNA可促进微生物的生长和繁殖,但过量的FNA会导致部分微生物不适应环境而被淘汰。FNA预处理对NOB的影响大于对AOB的影响,当FNA质量浓度由0增至6.4 mg/L时,NOB的相对丰度降幅比AOB的大;当FNA质量浓度由6.4 mg/L增至16.0 mg/L时,FNA对AOB的影响比对NOB的影响更大。
(3)生物膜经 FNA处理1次后,NAR即可达到 85%以上,且 MBBR-短程硝化工艺在常温和高DO条件下可以稳定运行40 d。
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