短程硝化SBR实时控制与微生物群落研究
The study on real-time control strategy of short-cut nitrification SBR and microbial community
通讯作者:
收稿日期: 2019-10-25
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Received: 2019-10-25
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采用短程硝化-反硝化SBR处理模拟氨氮废水,通过调控pH、溶解氧(DO)、温度和曝气时间实现SBR快速启动,并用DO、ORP的一阶导数实时控制反应。结果表明:第20天亚硝化率(NAR)达到95%。采用一阶导数作为控制参数时,NH4+-N去除率与NAR维持在97%以上。通过Slope公式对一阶导数算法进行优化,可达到更加稳定的控制效果。污泥的16S rDNA测序表明,Chloroflexi、Bacteroidetes、Proteobacteria和Actinobacteria是污泥中的优势菌门。在控制污泥龄(SRT)及实时控制条件下,NOB被逐渐淘洗出反应器。
关键词:
A short-cut nitrification-denitrification SBR is developed to treat the synthetic ammonium nitrogen wastewater. SBR can be started rapidly by adjusting the pH, dissolved oxygen(DO), temperature and aeration time. Besides, first derivatives of DO and ORP are applied to control the reaction process in real-time. The experiment results show the nitrite accumulation rate(NAR) reaches more than 95% on day 20. As a result of the control of first derivative, the ammonia nitrogen removal efficiency and NAR are above 97%. After the first derivative algorithm is optimized by Slope formula, a more stable control effect could be achieved. The results of 16S rDNA sequencing of sludge show that Chloroflexi, Bacteroidetes, Proteobacteria and Actinobacteria are the dominant bacteria in the sludge. Under the control of sludge retention time(SRT) and real-time control strategy, NOB is gradually washed out of the reactor.
Keywords:
本文引用格式
穆剑楠, 吴朕君, 杜亚飞, 李顺义.
Mu Jiannan.
本研究采用短程硝化—反硝化SBR,设置合理的启动条件快速启动反应器,采用DO、ORP的一阶导数实现对反应器的实时控制,提高控制系统的稳定性。进行为期197 d的长期试验,研究了实时控制条件下SBR对污染物的去除效果,进一步合理优化参数,同时考察污泥微生物群落在反应器启动过程中的变化特征。
1 试验材料与方法
1.1 试验装置
SBR反应器由有机玻璃制作,有效容积10 L,反应器内置梅特勒pH(EasySense pH 31)、DO(EasySense O2 21)、ORP(EasySense ORP 41)在线监测探头,反应器由PLC控制柜和自主研发的计算机软件(软著登字第2472076号)控制运行。在线监测探头通过安装在PLC上的数显面板将电信号传输至计算机软件,计算机软件实时显示DO、ORP、pH曲线,并计算DO与ORP的一阶导数,计算机软件有参数设置界面用来设置控制阈值,并通过PLC控制柜控制反应器各单元的开始与结束。反应器内置机械搅拌器并采用微孔曝气方式,用转子流量计控制曝气量和溶解氧。控温器控制反应器温度为(29.5±0.5)℃,反应器启动初期控制pH>8。反应器通过定期排泥将SRT控制在14 d左右。具体试验装置见图1。
图1
1.2 运行流程
反应器采用批式进水方式。在1个运行周期内,SBR反应器的运行分为预曝气、进水、好氧阶段、缺氧阶段、沉淀、排水6个单元。其中预曝气的作用是去除上一周期残留的COD,避免反应器内COD积累导致出水COD超标,减少COD对硝化反应产生的不利影响。预曝气的具体时间根据DO曲线的变化进行控制。缺氧阶段反应前会向反应器补加COD,本次试验用乙酸钠作碳源。在反应器常规运行期间,控制体积交换率为0.1。整个试验周期内前35天采用传统的时间控制方式,具体时间根据DO与ORP曲线及时调整;第36天开始采用实时控制方式,以DO与ORP一阶导数峰值作为控制参数。具体工况见表1。
表1 SBR运行工况
运行阶段 | DO/(mg·L-1) | 进水NH4+-N/(mg·L-1) | 控制模式 |
Ⅰ(1~20 d) | 0.1~0.4 | 500 | 时间控制 |
Ⅱ(21~35 d) | 0.4~0.5 | 500 | 时间控制 |
Ⅲ(36~65 d) | 0.7~0.8 | 750 | 实时控制 |
Ⅳ(66~89 d)间歇期 | |||
Ⅴ(90~95 d) | 0.3~0.4 | 750 | 实时控制 |
Ⅵ(96~197 d) | 0.3~0.4 | 250~750 | 实时控制 |
1.3 试验用水及接种污泥
试验用水采用模拟废水,每1 L水中含(NH4)2SO4 1.17~4.71 g,NaHCO3 3~12 g,CaCl2 0.194 g,MgSO4·7H2O0.456 g,KH2PO4 0.042 g,2 mL微量元素。微量元素组成:1.25 g/L EDTA,0.55 g/L ZnSO4·7H2O,0.4 g/L CoCl2·6H2O,1.27 g/L MnCl2·4H2O,0.4 g/L CuSO4·5H2O,0.05 g/L Na2 MoO4·2H2O,1.25 g/L FeCl3·6H2O,1.37 g/L CaCl2·2H2O,44.4 g/L MgSO4·7H2O。
在进水中添加无机碳源与少量磷源保证微生物的生长繁殖,控制进水中n(HCO3-):n(NH4+)始终为2:1。运行初期进水中n(NH4+):n(PO43-)为113:1,提高进水中的NH4+-N后(未提高PO43-),n(NH4+):n(PO43-)为169:1。反硝化所需有机碳源(无水乙酸钠)在好氧段结束后投加,具体投加量根据去除1 g N需要3~5 g COD的原则计算。
接种污泥取自河南省周口市莲花味精厂污水处理站。污泥悬浮物(SS)为48 g/L,可挥发性悬浮物(VSS)为26 g/L,接种前已将污泥驯化为硝化污泥。
1.4 分析项目
每天选取1个周期取泥水混合液测定反应器内各污染物浓度。NH4+-N的测定采用纳式试剂分光光度法;NO2--N、NO3--N采用ICS-900离子色谱(美国DIONEX公司)测定,SS和VSS用滤纸称量法测定。
亚硝态氮积累率(NAR)、游离氨(FA)、游离亚硝酸(FNA)按式(1)~式(3)计算。
式中:[NH4+-N]——氨氮质量浓度,mg/L;
[NO2--N]——亚硝态氮质量浓度,mg/L;
[NO3--N]——硝态氮质量浓度,mg/L;
T——温度,℃。
DO与ORP一阶导数按式(4)、式(5)计算。
1.6 污泥微生物取样及高通量测序
分别取原泥(Seed)、驯化后的全程硝化污泥(NF)、稳定运行的短程硝化-反硝化污泥(NTD)的泥水混合液于10 mL离心管中,将离心管置于离心机中以8 000 r/min的转速离心5 min,后将上清液弃去,将污泥样品置于-22 ℃冰箱中保存。用E. Z. N.A. soil试剂盒(Omega Bio-tek,Norcross,GA,U. S.)抽提总DNA,DNA的浓度和纯度用NanoDrop2000检测,用质量分数为1%的琼脂糖凝胶电泳检测DNA提取质量;用338F(5’-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3’)和806R(5’-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3’)引物对V3~V4可变区进行PCR扩增,扩增程序:95 ℃预变性3 min,27个循环(95 ℃变性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s),最后72 ℃延伸10 min(PCR仪:ABI GeneAmp® 9700型)〔5〕。
使用质量分数为2%琼脂糖凝胶回收PCR产物,用AxyPrep DNA Gel Extraction Kit(Axygen Biosciences,Union City,CA,USA)进行纯化,Tris-HCl洗脱,2%琼脂糖电泳检测。按照电泳初步定量结果,用QuantiFluorTM-ST(Promega,USA)检测定量。用Illu mina MiSeq系统(Illu mina,San Diego,USA)测序,所得结果过滤处理,得到优化序列;对优化序列进行OTU聚类分析和物种分类学分析,分析样品的多样性以及群落结构〔6〕。
2 结果与讨论
2.1 SBR反应器对NH4+-N的降解效果
SBR反应器共运行197 d,其对NH4+-N的去除效果及NAR如图2所示。
图2
在反应器运行过程中,NH4+-N去除率基本维持在97%以上。稳定运行期间出水NH4+-N基本低于2 mg/L,进水浓度的变化未对出水水质产生明显影响。前20天为建立短程硝化阶段,在此期间NAR迅速升高,并于第5天达到53.2%,满足了50%的成功启动标准,第20天时达到95%。前20天,SS与VSS均呈明显增长趋势,其中SS由3.81 g/L升至12.17 g/L,VSS由1.91 g/L升至4.01 g/L。这主要是因为反应器的体积交换率为0.1,导致反应器内积累大量无机盐,使SS快速升高。反硝化菌属于异养菌,在缺氧段前向反应器内投加碳源会使反硝化菌快速生长,导致VSS升高。第21~35天,NAR上升速度减小,第35天时NAR达到99%,此后维持稳定。反应器运行稳定后,SS与VSS仍表现出升高趋势,说明在反应器运行过程中污泥微生物量是逐渐富集的,反应条件和控制措施有利于微生物的生长繁殖。第148天时,反应器内初始NH4+-N提高至321.7 mg/L,对后续反应器运行产生负面影响,NH4+-N去除率降到31%,说明过高的基质浓度抑制了AOB降解氨氮的能力。研究表明,AOB可分为慢速生长型和快速生长型,分别适合在基质浓度较低和较高的条件下生长〔7〕,而本试验所用污泥更适宜在较低基质浓度下生长。反应器失稳期间虽然NH4+-N降解效果较差,但NAR并未受到明显影响,说明NOB仍处于被抑制的状态。反应器失稳后先将pH调低至7.5,再用自来水冲刷反应器,将进水NH4+-N改为250 mg/L并逐渐增加进水质量浓度至750 mg/L。第159天反应器恢复正常,出水NH4+-N为1.3 mg/L,NH4+-N去除率为97%。
2.2 反应器启动条件
图3
有文献报道,FA与FNA均对NOB有明显的抑制作用。FA对AOB和NOB的抑制质量浓度分别为10~150、0.1~1 mg/L〔12〕,可见AOB和NOB对FA的耐受程度存在明显差异,因此提高FA含量可对NOB产生选择性抑制。反应器内前20天的FA与FNA变化情况如图3(b)所示。由于反应器运行初期pH维持在8以上,因此第1天反应器内的FA即大于4 mg/L,第20天时FA达到10.98 mg/L。可见反应器启动期间FA始终远远大于NOB所耐受的浓度,但又小于AOB的抑制浓度,因此反应器得以快速启动并实现良好的亚硝化率。FNA对AOB与NOB同样存在抑制作用。FNA>0.27 mg/L即可对AOB、NOB产生抑制,且对NOB的抑制作用强于AOB〔13〕。由图3(a)可见,由于pH控制措施和反硝化菌存在,反应器内的pH始终处于较高水平,导致FNA处于极低的浓度水平,最大时也不超过0.004 mg/L,因此本试验中FNA对NOB的抑制作用极其微弱,对NOB起主要抑制作用的是FA。由于AOB的世代周期是8~36 d,NOB世代周期为12~59 d,二者存在较大差异且许多短程硝化反硝化的研究都在长泥龄(>12 d)条件下获得〔14〕,因此在SBR运行过程中保持SRT为14 d左右。通过以上条件的严格控制,AOB生长速率高于NOB,通过定期排泥可将NOB逐步排出SBR。
2.3 反应器控制方法
图4
如图4(a)所示,氨氧化前期的DO峰值代表预曝气阶段结束,反应器内易降解COD被消耗完成,开始进水后DO下降。DO对短程硝化的反应进程有很强的指示作用。在NH4+-N降解过程中,DO始终稳定且保持在1个较低水平,这主要是因为AOB在氧化NH4+-N过程中消耗大量氧气〔16〕。当NH4+-N基本降解完成后,DO曲线开始快速上升并出现跃升现象,此时积累的NO2--N达到最大值。继续维持曝气,NO2--N降低,NO3--N迅速升高,好氧结束时NO2--N质量浓度由39.6 mg/L降至10.11 mg/L。图4(b)中,DO上升过程中及时关闭曝气可使NO2--N积累,避免被进一步氧化,保证短程硝化反应的正常运行。同时由ORP曲线可以看出,反硝化进行完全后ORP会出现1个拐点,称作“硝酸盐膝”。此特征点可看作是反硝化终点的标志。
2.4 控制参数的选取与优化
图5
如图5(a)所示,好氧阶段当NH4+-N被降解殆尽时,DO一阶导数出现峰值,与DO曲线的快速升高对应;缺氧阶段,当反硝化接近终点时ORP一阶导数同样出现峰值,这样可解决因ORP下降过快而造成“硝酸盐膝”不明显而无法控制的问题。在实际控制中,可分别在计算机的好氧单元与缺氧单元输入DO、ORP一阶导数的峰值作为控制阈值。反应过程中计算机对探头测得的参数进行实时计算。在好氧阶段,当程序发现DO一阶导数大于设置的阈值时,则自动关闭曝气,切换至缺氧单元;在缺氧阶段,当ORP一阶导数小于设置的阈值时,则自动停止搅拌,进入沉淀单元,周而复始即可实现实时控制,既可避免过度曝气,又可提高运行效率。
试验过程中DO、ORP一阶导数可较好地满足实时控制反应器的需求,但一阶导数曲线仍会出现干扰信号,如曝气过程中存在气泡打在探头上的可能,会造成一阶导数剧烈波动,形成尖峰;试验后期ORP一阶导数的波动性同样变大,一旦干扰值超过设定阈值就会破坏系统稳定性。针对以上问题,试验后期对DO、ORP一阶导数的算法进行了优化。具体方法为用Slope公式对算法加以改进,将某一时刻的数据点与该时刻前9个数据点所得一次函数拟合曲线的斜率作为该时刻一阶导数,代替原来相邻两点计算得到的斜率作导数,这样可以大大减少干扰信号产生的影响。图5(b)为算法优化前的一阶导数曲线,可见曲线上存在大小不一的干扰信号,在ORP一阶导数上表现得尤为明显。图5(c)中,算法优化后的一阶导数曲线光滑平坦,干扰信号明显减少。
2.5 污泥微生物测序
为探究以上控制条件下污泥微生物群落的变化情况,对原泥(Seed)、驯化后的硝化污泥(NF)、短程硝化反硝化污泥(NTD)3种污泥进行16S rDNA测序。
图6
由图6(a)可见,原泥的生物多样性最多,短程硝化-反硝化污泥的生物多样性最少。一定程度上说明微生物多样性受反应器操作条件影响显著,适宜的反应条件可以逐渐富集目标微生物,并淘汰对反应不利或不适应该条件的微生物。3个污泥样本中,Chloroflexi、Bacteroidetes、Proteobacteria和Actinobacteria是优势菌门。Proteobacteria是污水处理系统中的优势菌门,其中包含多种代谢类型的菌种,在降解有机物的同时完成脱氮除磷〔18〕。Proteobacteria门级别下的Betaproteobacteria纲被发现存在多种具有硝化、反硝化和其他氮循环功能的微生物,且大多数氢自养反硝化菌也都属于Alpha-、Beta-、Gamma- proteobacteria〔19〕。AOB即属于Beta-proteobacteria纲。Chloroflexi在污泥中具有良好的脱氮除磷作用〔20〕。也有文献报道Chloroflexi常存在于菌胶团内部,为颗粒污泥的形成提供骨架支撑的作用〔21〕。Bacteroidetes具有非常强的营养物质代谢能力,可分解较为复杂的有机物〔22〕。短程硝化反硝化污泥样本中Bacteroidetes的相对丰度最高,这主要是由于反硝化前加入有机碳源,Bacteroidetes具有较强的分解有机物的能力,因此其相对丰度得到较大的提升。在硝化污泥样本中,Chloroflexi的相对丰度最高,主要是因为在污泥驯化中反应器的体积交换率为0.5,导致进水后反应器内有较为充足的氮和磷,且驯化过程没有排泥,导致该菌门的相对丰度较高。在原泥、硝化污泥污泥样本中均可探测到Nitrospirae,但短程硝化反硝化污泥污泥样本中未检测到Nitrospirae的相对丰度。
由图6(b)可知,样本被整体分成2组,Seed和NF为1组,NTD为1组。由于短程硝化-反硝化反应器的操作条件与污泥驯化时的操作条件相差较大,因此NTD与NF、Seed的微生物组成差别也较大。且Seed与NF之间的物种距离小于二者与NTD的物种距离,这是因为污泥驯化期间没有控制SRT,但在短程硝化-反硝化期间对SRT进行了控制,说明控制SRT对物种的筛选与淘汰作用明显。在短程硝化-反硝化反应器中,适宜的SRT和抑制条件已将NOB和其他不适应该条件的物种基本淘洗出反应器,保证了反应器的长期稳定运行,也进一步证明以上运行条件的正确性与有效性。
3 结论
(1)以硝化污泥为接种污泥,在启动阶段通过控制适宜的pH、温度和DO并调控曝气时间,可在5 d内快速启动短程硝化-反硝化SBR,NAR稳定维持在97%以上。
(2)DO与ORP的一阶导数重现性好,稳定性高。可以采用DO一阶导数的峰值控制好氧阶段曝气时间,从而停止曝气,促成NO2--N积累;采用ORP一阶导数峰值控制反硝化阶段时间,解决ORP曲线“硝酸盐膝”不明显的问题。在实时控制条件下,反应器对NH4+-N的去除率和NAR稳定维持在97%以上。
(3)在控制SRT与实时控制的条件下,短程硝化污泥微生物群落多样性最少,反应器对微生物群落的优化与筛选作用明显,有利于短程硝化系统的长期稳定运行。
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